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2株猪圆环病毒2型ORF2的克隆及序列分析

放大字体  缩小字体 发布日期:2009-04-22  来源:动物医学进展  作者:牛博  浏览次数:297

摘 要:根据GenBank中猪圆环病毒2型(PCV-2)的核酸序列,设计一对引物,采用PCR方法从疑似断奶仔猪多系统衰竭综合征(PMWS)的死亡仔猪组织病料中扩增出ORF2基因,将其克隆到pMD18-T载体上,筛选获得重组质粒pMD18T-ORF2。序列分析表明,克隆的ORF2基因与其他PCV-2ORF2的分离株的同源性在91.5%~99.4%,与杭州分离株的同源性达到99.4%,表明我国各地区之间PCV-2的分离株存在较大的差异。

关键词:猪圆环病毒2型;ORF2基因;克隆;序列分析

猪圆环病毒(PCV)属于圆环病毒科、圆环病毒属,病毒粒子为20面体对称,以滚环方式进行复制,该病毒的基因是一种环状、无囊膜、单链DNA[1]。PCV-2全基因为1 767 bp或1 768bp,共有11个阅读框,其中ORF1和ORF2是其主要的阅读框。ORF1编码病毒的复制蛋白,与PCV-1的ORF1编码的蛋白有相同的抗原性。而ORF2编码病毒的结构蛋白,具有较好的免疫原性,是构成重组疫苗和检测的首选基因[2-5]。Allan G M等[6]首先在患断奶猪多系统衰竭综合征(PMWS)的猪群中分离到PCV-2,并证明为PMWS的重要病原[7-8]。许多国家和地区的猪群检测到猪圆环病毒2型(PCV-2)。在国内,朗洪武等[9-10]分别通过血清学和病原学调查表明,我国已有PCV-2的流行。PCV-2常和猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、细小病毒(PPV)、伪狂犬病毒(PRV)混和感染[6],造成猪的免疫失败,给养猪业带来重大的经济损失。

1 材料与方法

1.1 病料

江西、湖北二个省采集的病料(断奶仔猪的脾、肾、淋巴结等),编号分别为JX、HB。

1.2 试剂

DNA提取试剂盒、DNA片段回收试剂盒、质粒提取试剂盒、pMD18-T vector、T4DNA连接酶等均购自宝生物工程(大连)有限公司;JM109由甘肃农业大学动物医学院实验室保存。

1.3 引物

根据GenBank中已发表的PCV-2ORF2的核苷酸全序列,设计一对引物P1:GCGCTCGAGTTAGGGTTTAAGTGGGG,P2:GCGGGATCCATGACGTATCCAAG,引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。

1.4 模板的制备

取少量死亡猪组织病料充分研磨制成悬液,反复冻融3次,离心取上清,用DNA提取试剂盒提取DNA,取适量用作PCR模板。

1.5 ORF2基因的扩增

PCR的反应体系50 μL,反应成分如下:10×PCR buffer 5 μL,dNTP 4 μL,DNA Polymerase0.25 μL,模板DNA 2 μL,上下游引物各1 μL(10 pmol/L),加灭菌超纯水补至50μL,均匀混和。PCR反应:95 ℃ 5 min;94 ℃ 1 min,54 ℃ 1 min,72 ℃ 1.5min,进行35个循环;72 ℃ 10 min。反应结束后取5 μL PCR产物,于10 g/L琼脂糖凝胶中电泳分析。

1.6 PCR产物的克隆

将PCR产物用10g/L琼脂糖凝胶电泳,切下含目的条带的凝胶,用DNA回收试剂盒回收PCR产物,按常规方法与pMD18-T载体连接;将连接产物转化大肠埃希菌JM109感受态细胞,涂布于含IPTG(24 mg/ mL)和X-gal(20 mg/mL)的LB固体培养基上,37 ℃培养12h,挑取上述转化平皿中的白色菌落,接种到含有Amp( 100 μg/ mL)的LB液体培养基。37℃振荡培养过夜,提取质粒进行酶切鉴定和PCR鉴定。筛选出阳性重组质粒。将阳性重组质粒送到上海生物技术有限公司测序。

1.7 序列分析

将测序结果用DNA Star软件与GenBank中其他PCV-2毒株ORF2基因的核苷酸进行同源性比较。

2 结果

2.1 ORF2基因的PCR扩增

PCR扩增产物经10 g/L琼脂糖凝胶电泳分析表明,扩增出与ORF2相应的目的片段,与预期结果相符(图1)。

M.DNA标准DL 2 000;1.JX株;2.HB株

M.DNA Marker DL 2 000;1.JX strain;2.HB strain

图1 图1 ORF2基因的PCR扩增结果

Fig.1 PCR products of ORF2 gene

2.2 重组质粒的筛选结果

PCV-2 ORF2的重组质粒用BamHⅠ和XhoⅠ双酶切可切出一条700 bp左右的片段(图2)。

M.DNA标准DL 2 000;1.JX株;2.HB株

M.DNA Marker DL 2 000;1.JX strain;2.HB strain

图2 重组质粒PMD 18-ORF2的酶切鉴定

Fig.2 Identification of recombinant plasmid PMD 18-ORF2

DNAStar分析软件对这些序列进行同源性分析发现,PCV-2毒株的ORF2基因之间核苷酸序列的同源性很高,介于91.5%~99.4%之间,进化树的分析发现HB株与杭州的分离株的亲缘关系比较近(图3)。

图3 PCV ORF2基因的系统发育进化树

Fig.3 Phylogenetic tree of PCV ORF2 genes

3 讨论

PCV-2与猪的多种疾病综合征有关,其中研究比较深入的是断奶仔猪多系统衰竭综合征,严重影响养猪业的发展。Fenaux M等[11]研究表明,遗传树的小分支与地域有关,但它们都在各自的地域缓慢的发生进化。有研究表明,通过氨基酸序列比较,发现在临床症状不同的PCV-2感染中,其ORF2有微小差异,推测ORF2的微小变化可能是临床症状变化的主要原因[12],Larochelle R等[13]通过对不同症状的PCV-2分离株的遗传树构建,表明PCV-2的不同小分支和症状不同之间没有明显的关系。表明PCV-2的变异引起不同症状的能力仍有待于进一步研究,也许混合感染的共致病因子对不同的症状有一定的影响。

本研究所克隆的两株毒株的ORF2基因与其他PCV-2毒株的ORF2基因核苷酸序列的同源性在91.5%~99.4%之间,其中与河南分离株的同源性只有91.5%,而与杭州、西班牙的分离株的同源性达到99.4%,说明国内分离或检测到的PCV-2的基因序列较为复杂,各地区间的差异较大,这些差异可能与国内猪的引进有一定的关系。由于PMWS不仅给养猪业造成严重的经济损失,同时其作为一种新的传染病,也给人类健康造成了威胁,因此应加强生猪的运输检疫和饲养管理。


 
 
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